(Ethylmethanesulfonate,EMS)是一种常用的化学诱变剂,能诱发产生高密度的系列等位基因点突变,具有效率高、负作用小、易操作等优点,目前已被广泛应用于植物的相关遗传研究和诱变育种工作中。在当前种质资源极为匮乏,基因资源日益枯竭的状况下,采用EMS诱发突变技术创造有用基因资源具有极其重要的意义。

EMS的特征

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①EMS分子式CH3SO2OC2H5,无色液体,分子量为124。

EMS水中溶解度为8%。pH=7条件下在水中半衰期20°C时为93h,30°C时为26h。

②EMS能使DNA分子上的嘌呤、嘧啶分子发生烷基化来影响mRNA的转录,随后使蛋白的合成过程发生紊乱,进而改变植物的性状。物理诱变譬如超声波、γ射线、中子等对物种的损伤较大,容易引起碱基的转换、颠换、移码、染色体缺失、易位、倒位等,从而引起生物的突变和死亡。

③相对于其它化学试剂诱变或者物理诱变,EMS诱变具有如下特点:

1)较高的突变频率和较少的染色体畸变。主要是EMS诱变使DNA分子上产生较多的点突变,对染色体损伤轻而不致引起染色体断裂产生畸变,可以针对农作物的某一特殊性质进行改良。

2)对处理材料损伤轻。EMS诱变相对于其它物理诱变的生物损伤小,不容易引起生活力和可育性下降,尤其是无性繁殖的植物由于不经历减数分裂过程繁殖后代,相对于可产生种子的植物,这种突变更容易向后代遗传。

3)成本低廉,操作简便。使用的EMS诱变剂处理材料不需要特殊的设备,成本低,一次可以诱变大量的材料,诱变效果较好。

4)EMS诱变剂对人体更具有危险性。EMS具有强烈的致癌性和挥发性,常用5%硫代硫酸钠作为解毒剂,因此在操作过程中要注意安全防护,严格遵守试验规则。

EMS诱变的方法和技术路线

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EMS诱变育种中,诱变材料不同,使诱变效率和筛选难度也有差异。一方面要保证诱变剂的有效渗入,二是要使植物能够顺利生长和发育。种子是理想的处理材料。也可以选择植物的器官和组织进行诱变处理。例如幼穗、花粉、芽、茎、愈伤组织等。

最常用的处理方法有:

1)浸泡法,就是把种子、芽等组织浸泡在适当浓度的诱变剂溶液中。以EMS浸泡法构建突变体库最成功的例子就是拟南芥突变体库的构建,通过EMS诱变拟南芥种子可以构建覆盖全基因的突变子 。

2)滴液法:在植物茎上划一道较浅的切口,然后将浸透诱变剂溶液的棉球经过切口浸入,此法可用于完整的植株或发育中完整的花序。

3)共培养法:在培养基中用较低浓度的诱变剂处理根或者花药共培养。在EMS诱变处理材料的过程中,必须保证有足够的溶液进入细胞,因此被处理的材料必须完全被溶液浸透,如果能够附以搅拌,对增加处理效果。由于EMS容易挥发,因此处理温度最好在20℃ 左右,并且在密闭状态下效果较好。

EMS诱变是个复杂的物理和化学过程,尤其是在构建植物突变体库中,为了获得较好的诱变效应,必须正确地掌握EMS诱变剂的最佳剂量。不同的物种对EMS的敏感程度不同,因此对EMS的浓度、处理温度和处理时间的反应效应也不同,必须通过预试验来确定最佳的处理剂量。通常采用预浸种至萌动露白后进行诱变处理,此时种子吸收诱变剂达到最适宜的速率和速度,且此时开始DNA合成,是最敏感的阶段,可以产生较高的突变频率,有望创制并筛选到目的突变体植株。

应用举例——菜心EMS诱变突变体库

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3.1 材料与方法

3.1.1 筛选种子EMS诱变最佳处理条件

挑选饱满的菜心高代自交系材料C40和小80天种子,分别设4个处理浓度(0.2%、0.4%、0.6%和0.8%)和3个处理时间(8、12和16 h)。每处理100粒种子,保证药液完全淹没种子,对照(CK)为纯水处理。诱变处理后,先用5% Na2S2O3溶液冲洗种子,终止反应,再用流水冲洗种子2 h,然后播种于装有育苗基质的育苗盘中进行水浮式育苗,成苗后移栽至田间,按常规方法管理。统计并分析诱变后菜心种子的成苗率、长势和结籽株比例等,筛选菜心种子EMS诱变最佳处理条件。

3.1.2 突变体库的构建

挑选饱满的菜心高代自交系小80天种子3000粒,用0.4% EMS处理12 h,然后育苗移栽,获得M1群体,然后对M1群体的植株进行自交授粉收获M2群体种子。随机选取种子量大的176份M2群体种子,挑选15粒饱满种子作为M2群体家系,按照家系双行条播种植,构成M2群体。以野生型菜心小80天为对照,对突变体库M1、M2群体中单株的变异性状进行调查。主要调查性状为株型、薹色、叶色、叶形和花色等。

3.2 结果与分析

3.2.1 最佳诱变条件的筛选

不同EMS处理浓度对菜心种子萌发及生长发育产生不同影响。0.2% EMS处理8 h后菜心种子的成苗率与CK相当,但比CK植株生长旺盛,早抽薹1~2 d,表明低浓度EMS短时间诱变对菜心种子的萌发和生长具有促进作用。随着EMS浓度的增大,菜心种子成苗率和结籽株比例逐渐降低。当诱变处理8 h,EMS浓度为0.6%时,C40和小80天菜心的成苗率分别为65%和70%,结籽株比例为13%和31%;EMS浓度升至0.8%时,C40菜心成苗率降至50%,小80天菜心成苗率变化不明显,结籽株比例均低于20%(图1和图2)。

由图1和图2还可看出,随着EMS处理时间的延长,菜心种子成苗率和结籽株比例逐渐降低。EMS处理浓度为0.4%时,诱变12 h,C40和小80天菜心的成苗率均为75%,结籽株比例分别为30%和45%;诱变16 h,C40和小80天菜心的成苗率分别降至60%和55%,结籽株比例均低于20%,表明EMS诱变不仅会抑制成苗率,还会严重影响结实情况。当EMS浓度为0.6%、处理时间为12 h时,M1群体出苗率接近半致死,但结籽株比例低于20%,不利于突变体库的构建。除了尽可能提高诱变频率外,还必须保证一定规模突变体库的构建,综合比较,最终选择0.4% EMS、诱变处理12 h为构建菜心突变体库的最佳处理条件。

不同基因型菜心材料对EMS的耐受性不同,C40菜心明显弱于小80天菜心。0.4% EMS处理种子16 h,C40菜心的成苗率为60%,基本不结籽,而小80天菜心的结籽株比例为16%;0.6% EMS处理种子12 h,C40菜心与小80天菜心的成苗率相同,但C40菜心生长势较小80天菜心弱,且结籽株比例仅5%,低于小80天菜心。不同菜心自交系材料对EMS的耐受性可能与植株的生长势有关系,与C40菜心相比,小80天菜心植株高大强壮,根系发达。因此,生长势强的菜心自交系EMS处理的时间或浓度可适当增大。

3.2.2 菜心突变体库M1群体表型变异

用0.4% EMS处理3000粒小80天菜心种子12 h,2019株成苗。M1群体幼苗定植于大棚网室,开花期套袋自交,成熟期分单株收获种子。在M1群体中,50%以上植株不结实或结实性差,仅收获500个单株种子。经EMS处理的M1群体植株,长势较CK差异明显,主要表现为植株矮小,叶片黄化、白化(图3-A和图3-B),叶片皱缩、畸形(图3-E和图3-F),叶片为嵌合体(图3-C和图3-D),花色变化(图3-G),丛枝(图3-H)等变异性状。通过对M1群体中自交后代的表型鉴定,发现白化、黄化、嵌合、畸形等一些变异性状不能遗传,可能是EMS化学药剂伤害造成的性状变化。

2.3 菜心突变体M2群体性状变异

随机选取M1群体中种子量大的176个单株,按家系双行条播种植,共获得176个家系的2110个成活的M2单株,构成M2群体。在M2群体中,全生育期内对其表型进行调查,发现表型变异株,包括叶形、叶色、株型、花色、生育期等五大类突变。

参考文献

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[1]张艳, 洪晓如, 黎庭耀,等. 菜心EMS诱变条件优化与突变体库构建[J]. 南方农业学报, 2021.

赛思基因(www.scientsgene.com),专注遗传转化技术的应用于开发,致力于打破基因型限制,助力基因编辑育种。

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