Samtools安装及常用命令详解

Samtools是一个用于操作sam和bam文件的工具合集。包含有许多命令。以下是常用命令的介绍

下载安装包：

http://www.htslib.org/download/

安装依赖：

yum install bzip2-devel ncurses-libs ncurses-devel xz-devel zlib-devel

编译安装Samtools：

tar xvf samtools-1.9.tar.bz2
cd samtools-1.9
./configure --prefix=/opt/samtools1.9
make
make install

配置环境变量：

gedit ~/.bashrc#Samtools1.9
export PATH=/opt/samtools1.9/bin:$PATHsource ~/.bashrc

运行

samtools

samtools常用命令详解

1. view

view命令的主要功能是：将sam文件转换成bam文件；然后对bam文件进行各种操作，比如数据的排序(不属于本命令的功能)和提取(这些操作是对bam文件进行的，因而当输入为sam文件的时候，不能进行该操作)；最后将排序或提取得到的数据输出为bam或sam（默认的）格式。

bam文件优点：bam文件为二进制文件，占用的磁盘空间比sam文本文件小；利用bam二进制文件的运算速度快。

view命令中，对sam文件头部的输入(-t或-T）和输出(-h)是单独的一些参数来控制的。

Usage: samtools view [options] <in.bam>|<in.sam> [region1 [...]]
默认情况下不加 region，则是输出所有的 region.Options: -b       output BAM默认下输出是 SAM 格式文件，该参数设置输出 BAM 格式-h       print header for the SAM output默认下输出的 sam 格式文件不带 header，该参数设定输出sam文件时带 header 信息-H       print header only (no alignments)-S       input is SAM默认下输入是 BAM 文件，若是输入是 SAM 文件，则最好加该参数，否则有时候会报错。-u       uncompressed BAM output (force -b)该参数的使用需要有-b参数，能节约时间，但是需要更多磁盘空间。-c       Instead of printing the alignments, only count them and print the total number. All filter options, such as ‘-f’, ‘-F’ and ‘-q’ , are taken into account.-1       fast compression (force -b)-x       output FLAG in HEX (samtools-C specific)-X       output FLAG in string (samtools-C specific)-c       print only the count of matching records-L FILE  output alignments overlapping the input BED FILE [null]-t FILE  list of reference names and lengths (force -S) [null]使用一个list文件来作为header的输入-T FILE  reference sequence file (force -S) [null]使用序列fasta文件作为header的输入-o FILE  output file name [stdout]-R FILE  list of read groups to be outputted [null]-f INT   required flag, 0 for unset [0]-F INT   filtering flag, 0 for unset [0] Skip alignments with bits present in INT [0]数字4代表该序列没有比对到参考序列上数字8代表该序列的mate序列没有比对到参考序列上-q INT   minimum mapping quality [0]-l STR   only output reads in library STR [null]-r STR   only output reads in read group STR [null]-s FLOAT fraction of templates to subsample; integer part as seed [-1]-?       longer help

例子：

将sam文件转换成bam文件
$ samtools view -bS abc.sam > abc.bam
$ samtools view -b -S abc.sam -o abc.bam提取比对到参考序列上的比对结果
$ samtools view -bF 4 abc.bam > abc.F.bam提取paired reads中两条reads都比对到参考序列上的比对结果，只需要把两个4+8的值12作为过滤参数即可
$ samtools view -bF 12 abc.bam > abc.F12.bam提取没有比对到参考序列上的比对结果
$ samtools view -bf 4 abc.bam > abc.f.bam提取bam文件中比对到caffold1上的比对结果，并保存到sam文件格式
$ samtools view abc.bam scaffold1 > scaffold1.sam提取scaffold1上能比对到30k到100k区域的比对结果
$ samtools view abc.bam scaffold1:30000-100000 $gt; scaffold1_30k-100k.sam根据fasta文件，将 header 加入到 sam 或 bam 文件中
$ samtools view -T genome.fasta -h scaffold1.sam > scaffold1.h.sam

2. sort

sort对bam文件进行排序。

Usage: samtools sort [-n] [-m <maxMem>] <in.bam> <out.prefix>
-m 参数默认下是 500,000,000 即500M（不支持K，M，G等缩写）。对于处理大数据时，如果内存够用，则设置大点的值，以节约时间。
-n 设定排序方式按short reads的ID排序。默认下是按序列在fasta文件中的顺序（即header）和序列从左往右的位点排序。

3.merge

将2个或2个以上的已经sort了的bam文件融合成一个bam文件。融合后的文件不需要则是已经sort过了的。

Usage:   samtools merge [-nr] [-h inh.sam] <out.bam> <in1.bam> <in2.bam>[...]Options: -n       sort by read names-r       attach RG tag (inferred from file names)-u       uncompressed BAM output-f       overwrite the output BAM if exist-1       compress level 1-R STR   merge file in the specified region STR [all]-h FILE  copy the header in FILE to <out.bam> [in1.bam]Note: Samtools' merge does not reconstruct the @RG dictionary in the header. Usersmust provide the correct header with -h, or uses Picard which properly maintainsthe header dictionary in merging.

4.index

必须对bam文件进行默认情况下的排序后，才能进行index。否则会报错。

建立索引后将产生后缀为.bai的文件，用于快速的随机处理。很多情况下需要有bai文件的存在，特别是显示序列比对情况下。比如samtool的tview命令就需要；gbrowse2显示reads的比对图形的时候也需要。

例子：

以下两种命令结果一样
$ samtools index abc.sort.bam
$ samtools index abc.sort.bam abc.sort.bam.bai

5. faidx

对fasta文件建立索引,生成的索引文件以.fai后缀结尾。该命令也能依据索引文件快速提取fasta文件中的某一条（子）序列

Usage: samtools faidx <in.bam> [ [...]]对基因组文件建立索引
$ samtools faidx genome.fasta
生成了索引文件genome.fasta.fai,是一个文本文件，分成了5列。第一列是子序列的名称；
第二列是子序列的长度；个人认为“第三列是序列所在的位置”，因为该数字从上往下逐渐变大，
最后的数字是genome.fasta文件的大小；第4和5列不知是啥意思。于是通过此文件，可以定
位子序列在fasta文件在磁盘上的存放位置，直接快速调出子序列。由于有索引文件，可以使用以下命令很快从基因组中提取到fasta格式的子序列
$ samtools faidx genome.fasta scffold_10 > scaffold_10.fasta

6. tview

tview能直观的显示出reads比对基因组的情况，和基因组浏览器有点类似。

Usage: samtools tview <aln.bam> [ref.fasta]当给出参考基因组的时候，会在第一排显示参考基因组的序列，否则，第一排全用N表示。
按下 g ，则提示输入要到达基因组的某一个位点。例子“scaffold_10:1000"表示到达第
10号scaffold的第1000个碱基位点处。
使用H(左）J（上）K（下）L（右）移动显示界面。大写字母移动快，小写字母移动慢。
使用空格建向左快速移动（和 L 类似），使用Backspace键向左快速移动（和 H 类似）。
Ctrl+H 向左移动1kb碱基距离； Ctrl+L 向右移动1kb碱基距离
可以用颜色标注比对质量，碱基质量，核苷酸等。30～40的碱基质量或比对质量使用白色表示；
20～30黄色；10～20绿色；0～10蓝色。
使用点号'.'切换显示碱基和点号；使用r切换显示read name等
还有很多其它的使用说明，具体按 ？ 键来查看。

7. 将bam文件转换为fastq文件

有时候，我们需要提取出比对到一段参考序列的reads，进行小范围的分析，以利于debug等。这时需要将bam或sam文件转换为fastq格式。

8. 使用bcftools

bcftools和samtools类似，用于处理vcf(variant call format)文件和bcf(binary call format)文件。前者为文本文件，后者为其二进制文件。

bcftools使用简单，最主要的命令是view命令，其次还有index和cat等命令。index和cat命令和samtools中类似。此处主讲使用view命令来进行SNP和Indel calling。该命令的使用方法和例子为：

$ bcftools view [-AbFGNQSucgv] [-D seqDict] [-l listLoci] [-s listSample] [-i gapSNPratio] [-t mutRate] [-p varThres] [-P prior] [-1 nGroup1] [-d minFrac] [-U nPerm] [-X permThres] [-T trioType] in.bcf [region]$ bcftools view -cvNg abc.bcf > snp_indel.vcf

参考：

http://www.chenlianfu.com/?p=1399

http://www.bio-info-trainee.com/518.html