上皮细胞培养方法及优化解决方案
上皮细胞培养
1)表皮细胞培养
1.取材:取外科植皮或手术残余皮肤小块,以角化层薄者为佳,早产流产儿皮肤更好,切成0.5~1 平方厘米小块。
2.EDTA 处理:先置入0.02%EDTA 中室温置5 分钟。
3.冷消化:换入0.25%胰蛋白酶中,置4℃过夜。
4.分离:取出皮肤,用血管钳或镊子把表皮与真皮层分开。
5.温消化:取出表皮单独处理,用剪刀剪成更小的块后,置入新的0.25%胰蛋白酶中,37℃再消化30~60 分钟。
6.用吸管轻轻反复吹打,使成细胞悬液。
7.培养液:通过80 目不锈钢纱网滤过后,低速离心,吸上清,直接加入Eagle液和20%小牛血清,制成细胞悬液,接种入碟皿中,CO2 温箱培养。
2) 乳腺组织培养
直接培养法:(适于培养含纤维少的软组织)
1.在含有少量培养液或Hanks 液的容器中,用锋利刀片将组织反复切割成碎块。
2.把组织碎块连同液体注入离心管中,再补加少许培养液,用吸管吹打片刻,置试管架3~5 分钟。吸除上层液可排除非乳腺细胞部分。重复2~3 次。
3.末次处理结束后,向沉降管中再补加培养液,用吸管稍吹打,使沉降物重悬。不待细胞团块下降立即通过3~4 层无菌纱布滤入另管中。
4.调整好适宜密度,接种入培养瓶中培养。
胶原酶消化法:(适于处理含纤维多的较硬组织)其过程与培养其它组织相同。
3) 胃上皮细胞培养
1.取材:取胃溃疡或胃癌手术切除胃标本远端非病变区粘膜少许。
2.清洗:用含庆大霉素(400 微克/毫升)和二性霉素(2 微克/毫升的Hanks)液漂洗后,用钝器剥离下粘膜,剪成1mm3 大小。
3.消化:在I 型胶原酶和透明质酸酶中,于37℃中消化80 分钟。
4.离心:收集细胞悬液,800 转/分离心后,Hanks 液漂洗两次。
5.接种:末次离心后加入含有1%~2%胎牛血清的完全培养基,接种入不同孔数的培养板中,接种量依不同实验目的而定。
4) 肝细胞培养
初代组织块培养:
取新鲜肝脏,先剥除被膜和血管等纤维成分,用刀或剪刀把肝脏剪成1mm3 左右的小块,采用帖壁培养法。初代消化法培养:
1.把肝组织切成2~4 立方毫米的小块,用不含钙镁的BSS 液洗两次。
2.移入1:1 的0.1%胰蛋白酶和0.1%胶原酶(都用无钙镁BSS 配置)中,4℃冷消化10~12 小时后,通过250 微米和64 微米尼龙网或不锈钢纱网滤过。
3.收集细胞、BSS 液洗1~2 次、计数、接种培养。
消化培养肝细胞的另一种方法是灌流法(肝脏灌流需用全肝,以较小动物如小鼠和大鼠为好):
1.无菌解剖动物,取出肝脏,先用BSS 洗除血污。
2.取5ml 注射器一支,吸取消化液后,把注射器头轻轻插入肝管中,用线绳结扎牢固,以防消化液漏出,轻轻把消化液注入肝管系统,并不时轻揉压肝脏,以便消化液进入肝小叶中;消化液在肝内停留20~30 分后,在吸出消化液的同时并轻揉压肝脏,以使肝细胞脱落和消化液吸出。
3.待吸净消化液后,注入离心管中,低速离心分离,用RPMI 1640 培养基培养(较其它培养基为好),能获得较纯的肝上皮细胞和获较好的效果。
传代培养:
待细胞生长连接成片后,用BSS 洗一二次,加1:1 的0.025%胰蛋白酶和0.02% EDTA 混合消化3~5 分钟,待细胞回缩,便停止消化,弃掉消化液,用BSS洗一二次,注入营养液,吹打,制成细胞悬液,再接种培养。
5)内皮细胞培养
1.取产后的新鲜脐带。如不立即培养可以保存于4℃中,但不宜超过12 小时。无菌剪取长10~15 厘米一段。其它如胚胎和幼体动物的大血管,亦可用于培养。
2.先用三通注射器吸温PBS 液注入脐带的静脉中,洗除残血,注入口处宜用线绳结扎,以防液体返流。
3.用血管钳夹紧脐带一端,从另端向脐静脉中徐徐注入最终浓度为0.1%的胶原酶,待末端出现液体后结扎之,令充满血管,注入口亦应结扎,以防液体返流,消化3~10 分钟。
4.吸出含有内皮细胞的消化液,注入离心管中,为获取更多细胞,可再注入温PBS 冲洗2~3 次彻底清除干净残余细胞,一并注入离心管中离心。
5.吸除上清,加1640 培养液,制成细胞悬液,接种入瓶皿中培养,顺利时2~3 天内细胞即可长成单层。
6)毛细血管内皮细胞培养
肿瘤条件培养基制备:
1.取C3H 小鼠的S-180 实体肉瘤组织。
2.胰蛋白酶消化,Dulbecco 改良Eagle 氏培养液15ml(含10%小牛血清),接种到T-75 Falcon 产培养瓶中培养。
3.在细胞生长接近完全汇合时,收集培养液制成条件培养基;再用含10%小牛血清的新培养液后,也每隔两天收集一次,可获得多量条件培养基。
4.4000 转/分离心后,再通过0.22μm 微孔滤膜滤过,-20℃冻存备用(临用前融解)。
初代培养:
1.取材:取新鲜牛肾上腺数个,先用Hanks 液洗除血污。
2.剥除被膜,分离出皮质,切成1 立方毫米小块,加0.5%胶原酶室温中消化1 小时,每隔10 分钟用吸管吹打悬液令消化充分。
3.通过不锈钢纱网滤过,网眼要求只允许能通过小于110 微米长的毛细血管小段。
4.650rpm,4℃,离心7 分钟后,弃掉上清胶原酶。
5.沉淀物用培养液重悬并离心,再重悬,再离心,共两次。
6.末次沉淀物仍用含有10%小牛血清的Dulbecco 改良Eagle 氏培养液重悬后,稍吹打。
7.接种于铺有明胶底层的培养皿中,37℃培养,在培养头1~3 小时中,毛细血管小段和内皮细胞最先帖附于底物上,而肾上腺细胞和成纤维细胞却仍在培养液中漂浮。
8.趁此时,吸除培养液,再加入肿瘤条件培养液,每两天换液一次。毛细血管小段一般成自1~4 个内皮细胞,以后每个小段在底物上慢慢展成特殊形态的细胞岛,能持续2~5 天。
毛细血管内皮细胞分离培养:
1.初代培养2~3 天后,镜下确认几个毛细血管内皮细胞岛,在培养皿背面,用不脱色笔划圈圈起。
2.镜下检查,如圈内残有非内皮细胞时,可用显微细针在倒置显微镜下挑除。此操作用细胞解剖器或用手操作均可,宜在净化台无菌气流中、打开培养皿盖进行,但时间不宜过长(15~20 分钟),圈内非内皮细胞可用无菌胶刮除。
3.用培养液漂洗两次,以去除漂浮细胞。
4.剩余内皮细胞岛如小(5~20 个细胞)而少时,生长增值变得缓慢或不完全不生长,此时需加入3T3 等饲细胞,饲细胞接种量为4000 细胞/cm2。
5.当内皮细胞充满所有饲细胞空间后,用胰蛋白酶消化、离心、加入肿瘤条件培养基。
6.接种入明胶底物皿中继续培养(饲细胞死亡淘汰),细胞增殖生长汇合后,按1:5 传代。
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