文献阅读---普通狗牙根阳江基因组单倍型解析与基因组稳定性和匍匐性研究
普通狗牙根阳江基因组单倍型解析与基因组稳定性和匍匐性研究
- 1、测序材料(普通狗牙根)
- 2、测序策略和分析方法
- 2.1 Illumina测序 & 测序数据基因组大小和杂合度分析 & 流式细胞仪估算基因组大小
- 2.2 Pacbio测序 & 基因组初步组装(contig level)
- 2.3 Bionano测序 & Bionano应用
- 2.4 Hi-C测序 & Hi-C应用
- 2.5 蛋白编码基因和重复序列注释
- 2.6 非编码RNA基因预测 & 基因家族分析 & WGD分析
- 3. 研究结果
- 4. 总结
1、测序材料(普通狗牙根)
本研究选择的测序品种为扬州大学种植的普通狗牙根
(阳江狗牙根),该品种是2007年由江苏中科院植物所选育的国审品种。
(1)阳江狗牙根生物学特性
阳江狗牙根具非常发达的匍匐茎和根状茎,草层自然高度为10.0cm左右, 匍匐茎棕褐色,节间长度为1.9-2.5cm,节间直径为0.07-0.09cm,叶片线型,叶长为2.8-3.5cm,叶宽为0.18-0.22cm,叶深绿色,穗状花序3-5枚呈指状簇生于杆顶部,高度为9.0-12.0cm,花序长度为2.3-2.8cm,小穗长度为0.19-0.22cm,柱头浅紫色,6-7月为开花高峰期,9-10月亦有少量花序开放。成坪迅速,匍匐性强,密度高,草层厚,耐践踏性强,耐重度盐碱,无明显病虫害,与杂草竞争能力强,采用营养繁殖(匍匐茎、地下茎、直立茎)方式繁殖。目前,已经在长江中下游地区以及我国东部盐碱地绿化、运动草坪、保土草坪建植中成功得到规模化应用,已初步应用于热带珊瑚岛的生态建设。
(2)关中狗牙根
此外,2017年该单位也选育了关中狗牙根(商品名:多面手狗牙根)。该品种叶色深绿,密度较高,草层厚实,花序少,地下茎和根系发达,成坪迅速,抗寒性强,绿期长,耐盐耐旱性强,耐瘠薄,养护要求低,适用京津冀及以南地区的运动草坪、盐土草坪以及保土草坪建植。
2、测序策略和分析方法
2.1 Illumina测序 & 测序数据基因组大小和杂合度分析 & 流式细胞仪估算基因组大小
(1)Illumina测序
Illumina测序使用的材料是叶片冻样,使用DNA试剂盒提取后跑胶鉴定质量。然后,使用提取的DNA制备插入片段文库(270 bp & 500 bp ),测评平台是HiSeq X Ten。测序得到的原始数据需要剔除接头序列
和低质量序列
,使用的软件是SOAPnuke v2.1.6
,随后得到高质量测序数据161.1 Gb
。
(2) 测序数据基因组大小和杂合度分析
使用测序的161.1Gb的数据可以进行基因组大小和杂合度评估,使用的软件和步骤是:首先使用Jellyfish v2.3.0
统计Kmer分布,得到Kmer peak值,然后将Kmer peak值作为参数放入GenomeScope v2.0
进而估算基因组大小
和基因组杂合度
。
(3)流式细胞仪估算基因组大小
流式细胞术(flow cytometry)被使用估算基因组大小,其中水稻品种93-1
1被用作基因组大小内参标准(internal standard, 430Mb)。使用FACSCanto™ II 流式细胞仪(BD Biosciences)分析样品,使用 BD Spectrum Viewer 分析结果。
2.2 Pacbio测序 & 基因组初步组装(contig level)
(1)Pacbio RSII测序(hifi reads?
)
通过分离系统选择高分子量DNA样品(high-molecular weight,HMW),构建8个20kb的测序文库(SMRTbell Template Prep Kit)。在PacBio RSII 平台(Pacific Biosciences)
测序,
(2)初步组装
使用 Hifiasm v0.124
将Pacbio的151.99 Gb
的数据组装而成contig level,并由 Racon v1.4.35
纠错。 使用 Bwa-mem v2.2.16
将 Illumina 测序读数与组装的contig比对,基于比对结果,再使用 Pilon v1.247
校正初步组装序列(contig level)。
2.3 Bionano测序 & Bionano应用
(1)Bionano成像
从新鲜叶片中提取HMW DNA,DNA 被单链切口核酸内切酶 Nt.BspQI
消化,荧光标记,加载到 Saphyr Chip® 中,并在 Saphyr 光学基因组图谱仪 (Bionano Genomics) 上成像。
(2)Bionano应用
对得到395.4Gb的Bionano数据进行过滤,标准是长度不小于100bp且标签数目不小于6,得到954个光学图谱。为辅助组装,将PacBio组装的contig序列转化为计算机 BspQI 消化的参考基因组图谱,与光学基因组图谱进行比较。 使用 Bionano Solve™ v3.6.1.8
比对和合并上面两部分数据,将基因组图谱进一步转化为框架序列(scaffold level)。
2.4 Hi-C测序 & Hi-C应用
(1)Hi-C测序
使用甲醛固定新鲜叶片中DNA的3D结构,提取基因组 DNA 并用限制性内切酶 MboI 消化。 消化后在末端被生物素标记并随机连接。然后将DNA 剪切成 300-600 bp 长度的片段,修复平端,并使用链霉亲和素下拉纯化。
(2)Hi-C应用
纯化后的DNA序列进行Illumina HiSeq X Ten
测序,生成231.38 Gb
数据。使用 Juicer v1.69
将配对末端读数映射到比对到框架序列(scaffold),以区分有效和无效的相互作用对
。 获得的 1.85 亿个有效相互作用对(55.5 Gb
数据)进一步用于调整scaffold中序列的相对位置,最后使用 3D-DNA
将框架序聚类成假染色体(pseudo-chromosomes)。
2.5 蛋白编码基因和重复序列注释
(1)蛋白编码基因注释
结合同源比对预测、从头算预测和转录组辅助预测
方法来鉴定蛋白质编码基因。
同源比对预测
选择5个物种(水稻,二穗短柄草,玉米,高粱和复活草/还魂草):
O. sativa、
Brachypodium distachyon、
Zea mays、
Sorghum bicolor 、
Oropetium thomaeum
使用scaffold序列对上面5个物种的蛋白编码序列进行blast
搜索,通过GeneWise
鉴定基因结构。
从头预测
选择5个软件(均为默认参数):
Augustus v3.4.0、
geneid v1.4.4、
FgeneSH、
GlimmerHMM v3.0.4、
Genscan
转录组辅助预测
使用Pacbio混样测序和下载的6个组织器官的RNA-seq数据:
使用GMAP
将Pacbio数据与组装的基因组比对,并使用 PASA
对基因结构进行建模。
下载Illumina转录组测序数据为使用 TopHat v2.1.128
比对,并使用 Cufflinks v2.2.129
对基因结构进行建模。
最后,将上面三种预测策略的结果合并去冗余,使用的软件是EVidenceModeler v1.1.130(EVM)
,功能注释是通过使用 eggNOG-mapper v232
对 eggNOG v5.0
数据库进行直系分配获得。分别对GO和KEGG数据库进行比对,使用KOBAS
对KEGG进行富集分析。结合 PlantTFDB
数据库,使用 iTAK
注释转录因子。
(2)重复序列注释
预测采用两种策略:已知数据库搜索的同源预测
和从头预测
。
同源预测使用RepeatMasker v4.0.912对Repbase进行搜索,从头预测使用5个软:
RepeatModeler、
PILER、
RepeatScout、
LTR_Finder、
Tandem Repeats Finder
使用具有默认参数的 LTR_retriever v2.9.018
计算LAI评估基因组质量。
使用具有搜索参数1 1 2 80 5 200 2000 -d –h
的Tandem Repeats Finder
专门识别推定的着丝粒重复
阵列,并用MEGA构建系统发育树,用来区分亚基因组
。
根据转座子的命名系统手动检查和分类识别的重复序列。 使用公式 T = k/2r
计算不同家族的长末端重复反转录转座子 (LTR-RTs) 的插入时间,其中 k 是完整 LTR-RTs 的 5’ LTR 和 3’ LTR 之间的发散距离和 r 是碱基替代率(草类为 1.38 × 10-8
替代/地点/年)。
2.6 非编码RNA基因预测 & 基因家族分析 & WGD分析
(1)非编码RNA基因预测
tRNAscan-SE-2.0和Barrnap分别预测tRNA和rRNA,miRNA, snoRNA, and snRNA使用Infernal v1.1.4的Rfam进行预测。
(2)基因家族分析
基因家族分析选用下面的10个物种(Phytozome
)
A. thaliana, O. sativa, B. distachyon, Z. mays, S. bicolor, O. thomaeum, Panicum hallii, Setaria viridis, Hordeum vulgare,Tritcum urartu
使用OrthoFinder v2.5.4
鉴定基因家族(all-against-all blast),MUSCLE
比对确定的 112 个单拷贝直系同源基因家族,使用 OrthoFinder
构建系统发育树,其中拟南芥
作为外群。
PAML v4.9
用于估计 C. dactylon 的分化时间,使用 TimeTree 数据库
中记录的其他 10 个物种的分化时间作为依据。
(3)WGD分析
先使用blastp搜索,然后使用MCScanX鉴定共线性区块(syntenic block,>= 50 gene PAML v4.9 计算同线基因对的每个位点的同义替换值 (Ks),并绘制 Ks 值的分布以使用公式 T = Ks/2λ
推断物种形成或全基因组复制 (WGD) 事件的时间 ,其中 Ks 是峰值 Ks 值,λ 是平均替代率(草的 6.5 × 10-9
替代/地点/年)。
重组调节基因和分蘖角基因使用的是blastp同源比对。
3. 研究结果
Figure1,基因组概览
Table,注释基因和重复等信息统计
Figure2, 基因家族分析和分化时间推断
Figure3,亚基因组共线性和表达模式
Figure4,调节重组基因的进化模式
Figure5,调节分蘖角基因的进化模式
4. 总结
(1)本研究对普通狗牙根的基因组进行测序和注释。 组装后的基因组包含 36
条假染色体,包括 37.91%
的基因组大小的重复序列,并编码 76,879
个蛋白质编码基因。
(2)多倍体 C. dactylon 基因组由来自两轮 WGD
事件的四种单倍型组成。 尽管鉴定了一些单倍型特异性基因和转座子,但在四种单倍型中未检测到全局亚基因组优势
。
(3)成功确定了维持基因组稳定性的 ZMM 依赖性调节机制
与分蘖角调节基因
的协同进化。
个人感觉,这个文章值得学习,文章方法步骤详实。确实为普通狗牙根的研究奠定重要基础,开启狗牙根的基因组时代。当然,分子生物学研究还是相对滞后,有待发展。
参考:
https://www.frontiersin.org/articles/10.3389/fpls.2022.890980/full#h13
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